伯樂(Bio-Rad)Gene Pulser Xcell 電穿孔系統(tǒng)(包括1652660型號) 的快速操作指導(dǎo),適用于日?;蜣D(zhuǎn)染實驗。此流程為標準化操作簡要,幫助用戶快速、高效、安全地完成一次完整的電穿孔實驗:
檢查組件連接
確保主機、CE 模塊(用于指數(shù)波)或 PC 模塊(用于方波)已正確連接;
ShockPod 電擊槽已插入主機并就位;
電源線連接穩(wěn)固,打開主電源開關(guān)。
預(yù)熱細胞與緩沖液
使用專用電穿孔緩沖液(如 Bio-Rad Gene Pulser Buffer);
細胞應(yīng)處于對數(shù)生長期,低鈣無血清狀態(tài)最佳;
樣品溫度控制在冰上或4℃,電穿孔后立即恢復(fù)至37℃。
混合樣品
合適濃度的細胞(約1×10?);
質(zhì)粒DNA或RNA(通常為0.1–10 μg);
緩沖液補足至合適體積(10–500 μL,依據(jù)電擊杯大?。?。
在1.5 mL無酶管中加入:
去除氣泡
輕輕彈擊比色皿或使用微量離心,確保無氣泡;
將混合液轉(zhuǎn)移至電擊杯中(0.2 cm / 0.4 cm 電極間距視細胞類型選擇)。
選擇波形模式
真核細胞:選擇 指數(shù)波(Exponential Decay);
原核細胞(細菌、酵母):選擇 方波(Square Wave)。
設(shè)定參數(shù)(參考值)
電壓:1,800–2,500 V(0.2 cm 杯);
脈沖時間:5 ms;
重復(fù)次數(shù):1–2 次。
電壓:250–300 V(0.4 cm 杯);
電容:250 μF;
電阻:∞;
哺乳動物細胞(指數(shù)波):
細菌(方波):
保存設(shè)置(可選)
使用界面保存為自定義 protocol,便于重復(fù)實驗調(diào)用。
插入電擊杯
將裝有樣品的比色皿放入 ShockPod 中;
關(guān)閉蓋子或壓緊槽位確保安全接觸。
按下【Pulse】鍵
系統(tǒng)釋放脈沖;
屏幕將顯示電壓、脈沖時間與電阻結(jié)果;
若出現(xiàn)電弧,需重新準備樣品并檢查液面。
立即移出樣品
將細胞從比色皿轉(zhuǎn)移至溫熱的培養(yǎng)液中進行恢復(fù)(如添加預(yù)熱DMEM + FBS);
靜置 5–10 分鐘后可接種入培養(yǎng)皿或離心收集繼續(xù)實驗。
取出比色皿,清洗干燥備用;
關(guān)閉主機電源,斷開電源插頭;
清潔 ShockPod 電擊槽(干布擦拭);
如長時間不使用,請覆蓋防塵罩保存設(shè)備。
| 問題 | 可能原因與建議解決方法 | 
|---|---|
| 電?。ˋrc) | 比色皿中有氣泡、液面過高、離子強度太高 | 
| 脈沖時間異常短 | 設(shè)置不當、細胞濃度過高、電阻太低 | 
| 轉(zhuǎn)染效率低 | 緩沖液不兼容、DNA質(zhì)量不高、電壓過低 | 
| 細胞死亡率高 | 電壓過高、電容過大、處理液未冷卻 | 



          
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