伯樂(Bio-Rad)Genepulser Xcell電穿孔儀是一款專為細胞電穿孔轉(zhuǎn)化設(shè)計的高性能儀器。該系統(tǒng)利用瞬時高壓電場改變細胞膜通透性,使外源DNA、RNA或蛋白質(zhì)等分子進入細胞,從而實現(xiàn)基因轉(zhuǎn)染或轉(zhuǎn)化操作。電穿孔是一種高效、非病毒介導(dǎo)的基因?qū)敕椒ǎm用于細菌、酵母、植物原生質(zhì)體及哺乳動物細胞等多種類型的細胞體系。
Genepulser Xcell系統(tǒng)通過精確控制電壓、脈沖時間、電容、電阻等參數(shù),確保實驗重復(fù)性與穩(wěn)定性,廣泛應(yīng)用于分子克隆、基因編輯、蛋白表達及免疫學(xué)研究等領(lǐng)域。
Genepulser Xcell電穿孔儀主要由主機控制模塊、Capacitance Extender電容擴展模塊、電極腔體、電極杯、顯示控制面板及安全保護系統(tǒng)構(gòu)成。各模塊功能如下:
主機模塊:核心控制單元,負責(zé)電壓輸出、脈沖控制、信號檢測及實時參數(shù)顯示。
電容擴展單元:用于調(diào)節(jié)電容值范圍,適配不同類型細胞的轉(zhuǎn)化條件。
電極腔體:與樣品直接接觸的部件,根據(jù)實驗類型可選擇0.1 cm、0.2 cm或0.4 cm間距的電極杯。
顯示控制面板:用于參數(shù)設(shè)定、狀態(tài)監(jiān)控及數(shù)據(jù)讀取,操作界面清晰,支持自定義參數(shù)保存。
安全系統(tǒng):包含過壓保護、放電延遲保護及自動復(fù)位功能,防止誤操作造成設(shè)備或樣品損傷。
該系統(tǒng)支持手動模式與預(yù)設(shè)程序模式,可根據(jù)實驗需求快速切換,以便在多種實驗條件下實現(xiàn)最優(yōu)轉(zhuǎn)化效率。
電穿孔的核心原理是通過瞬間高壓脈沖使細胞膜產(chǎn)生短暫的可逆性孔道,從而使外源物質(zhì)進入細胞內(nèi)部。主要影響因素包括電壓強度、脈沖持續(xù)時間、電容、電阻、樣品濃度和介質(zhì)電導(dǎo)率等。
電壓(Voltage):決定電場強度,是影響穿孔效果的關(guān)鍵參數(shù)。高電壓可提高轉(zhuǎn)染效率,但過高可能導(dǎo)致細胞死亡。
電容(Capacitance):控制放電時間常數(shù)(τ = RC)。較大的電容可延長脈沖持續(xù)時間,適合真核細胞;較小的電容適合原核細胞。
電阻(Resistance):影響電流流速與能量分布,適當(dāng)?shù)碾娮枘芊乐惯^載放電。
脈沖時間:決定細胞膜開孔持續(xù)時間。時間過短會影響導(dǎo)入效率,過長則會增加細胞膜不可逆損傷的風(fēng)險。
緩沖液電導(dǎo)率:高電導(dǎo)率溶液易造成放電不穩(wěn)定,應(yīng)使用專用電穿孔緩沖液。
Genepulser Xcell允許精確設(shè)定上述參數(shù),并能實時顯示放電曲線,方便操作者優(yōu)化實驗條件。
樣品準(zhǔn)備
使用對數(shù)生長期細胞,確保細胞活性高。
洗滌細胞三次以去除培養(yǎng)基中離子,懸浮于電穿孔專用緩沖液中。
調(diào)整細胞濃度,一般為10?個細胞/mL。
加入適量質(zhì)粒DNA或RNA混合均勻。
電極杯準(zhǔn)備
選擇適合細胞類型的電極間距(如細菌用0.2 cm杯,哺乳動物細胞用0.4 cm杯)。
用無菌水沖洗電極杯,避免殘留鹽分。
加入適量樣品(一般為0.4–0.8 mL)。
參數(shù)設(shè)定
打開主機電源,確認系統(tǒng)自檢通過。
設(shè)定電壓、電容、脈沖次數(shù)及間隔時間。
可根據(jù)實驗經(jīng)驗或廠家推薦參數(shù)設(shè)定初始條件。
按下“Set”鍵確認所有參數(shù)后,準(zhǔn)備執(zhí)行穿孔。
電穿孔執(zhí)行
插入電極杯并確保接觸良好。
按下“Pulse”鍵,儀器自動輸出脈沖。
完成后,等待指示燈熄滅方可取出樣品,避免殘余電荷。
樣品后處理
立即將細胞轉(zhuǎn)移至適合恢復(fù)的培養(yǎng)基中。
靜置于37℃(或相應(yīng)條件)孵育10–15分鐘以恢復(fù)膜完整性。
隨后進行常規(guī)培養(yǎng)或篩選操作。
不同細胞類型對電穿孔條件的耐受性不同,優(yōu)化過程需要結(jié)合實驗數(shù)據(jù)逐步調(diào)整。以下是常見優(yōu)化方向:
電壓調(diào)整:若轉(zhuǎn)化率低,可逐步提高電壓;若細胞死亡率高,應(yīng)適當(dāng)降低。
電容選擇:哺乳動物細胞通常需要較高電容(500–950 μF),細菌與酵母細胞適合較低電容(25–200 μF)。
脈沖次數(shù):單次脈沖適用于多數(shù)情況,但對部分細胞可嘗試雙脈沖以提高導(dǎo)入效率。
緩沖液優(yōu)化:使用低離子濃度的緩沖體系可減少電弧放電風(fēng)險。
樣品體積與濃度:保持電極間樣品液體覆蓋完整但不過量,避免氣泡產(chǎn)生。
通過系統(tǒng)性優(yōu)化,可顯著提升基因?qū)胄什⒔档图毎麚p傷率。
使用電穿孔儀前,應(yīng)確保設(shè)備接地良好,防止漏電。
實驗過程中嚴(yán)禁打開電極腔體蓋板。
放電完成后,應(yīng)等待設(shè)備自動放電完畢后再取樣。
不同樣品應(yīng)使用獨立電極杯,防止交叉污染。
長時間不使用設(shè)備時,應(yīng)切斷電源并覆蓋防塵罩。
電極清潔:每次實驗結(jié)束后立即用蒸餾水沖洗電極杯并晾干。若有沉積物,可使用70%乙醇輕拭清潔。
系統(tǒng)校準(zhǔn):建議每6個月進行一次電壓與電容校準(zhǔn),以確保參數(shù)輸出準(zhǔn)確。
散熱檢查:保持通風(fēng)良好,避免長時間高強度使用導(dǎo)致過熱。
顯示系統(tǒng)維護:定期清理控制面板,避免粉塵進入按鍵縫隙。
電源管理:使用穩(wěn)定電壓電源,防止電壓波動影響儀器性能。
良好的維護能延長設(shè)備壽命并保持實驗數(shù)據(jù)的可重復(fù)性。
          
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