伯樂(Bio-Rad)Genepulser Xcell電穿孔儀是現(xiàn)代分子生物學實驗中常用的高性能電穿孔設(shè)備,主要用于將DNA、RNA、蛋白質(zhì)或其他外源分子導入各種類型的細胞中,如細菌、酵母、植物原生質(zhì)體以及哺乳動物細胞。電穿孔的成敗與電場參數(shù)設(shè)置密切相關(guān),但同樣關(guān)鍵的是樣品的正確加載與處理。
合理的樣品加載不僅影響電穿孔效率和細胞存活率,還直接關(guān)系到實驗結(jié)果的可重復性和數(shù)據(jù)的可靠性。本篇將從準備、裝載、運行到后處理全過程,系統(tǒng)介紹Genepulser Xcell電穿孔儀的樣品加載方法與操作要點。
電穿孔的核心機制是通過瞬間高壓電場在細胞膜上形成暫時性孔道,使外源分子進入細胞。樣品加載的目標是在保證電場均勻作用的前提下,使細胞和外源分子充分接觸,同時避免電弧放電或細胞損傷。
因此,樣品加載過程應(yīng)確保以下條件:
電極間距離固定且液體體積合適;
細胞濃度適宜且均勻分布;
電導率和離子強度控制在安全范圍;
樣品無氣泡、無顆粒雜質(zhì);
樣品溫度與設(shè)備參數(shù)相匹配。
只有在這些條件得到嚴格控制的情況下,電穿孔的能量才能均勻分布,細胞膜孔洞可逆恢復,達到高效轉(zhuǎn)化的目的。
不同細胞類型對電穿孔條件的敏感程度不同,但樣品制備的總體原則是一致的,即保持細胞活性、降低導電雜質(zhì)、避免鹽離子積累。
細菌細胞(如大腸桿菌):
通常使用對數(shù)生長期的細胞進行處理,收集后用無離子水或低離子緩沖液(如10%甘油)反復洗滌,以去除培養(yǎng)基中的鹽分。離心后重懸,最終細胞濃度控制在1×10?個/mL左右。
真核細胞(如哺乳動物細胞):
應(yīng)保持細胞狀態(tài)良好,無明顯凋亡或壞死。常用PBS洗滌去除培養(yǎng)液成分,再重懸于專用電穿孔緩沖液中。緩沖液應(yīng)低導電、pH穩(wěn)定,以防電擊時產(chǎn)生氣泡或電弧。
酵母或植物原生質(zhì)體:
需在預(yù)處理后去除細胞壁,再進行低離子緩沖液洗滌。特別注意防止?jié)B透壓變化引起的細胞破裂。
外源分子應(yīng)高度純化,無蛋白質(zhì)、鹽、乙醇等雜質(zhì)殘留。常使用純化柱法或乙醇沉淀法凈化質(zhì)粒DNA,溶解于低離子緩沖液(如TE或ddH?O)中。
DNA濃度一般控制在10–100 μg/mL范圍內(nèi),過高可能增加導電性導致電弧放電,過低則降低轉(zhuǎn)化效率。
電穿孔緩沖液在電穿孔體系中起到導電介質(zhì)的作用,既要保證電場傳導,又要防止細胞損傷。
常見緩沖體系包括:
10%甘油;
0.1 M蔗糖溶液;
專用低導電電穿孔緩沖液(如伯樂推薦緩沖液)。
電導率通??刂圃?–8 mS/cm,pH值維持在7.0–7.5范圍內(nèi)。
Genepulser Xcell配套使用標準電穿孔杯,常見間距為0.1 cm、0.2 cm和0.4 cm三種規(guī)格。間距越小,所需電壓越低,適合細胞較脆弱的類型;間距較大則適合細菌等耐受性強的細胞。
在樣品加載前,應(yīng)確保電穿孔杯:
完全干凈,無殘留鹽或樣品;
電極無腐蝕或氧化;
使用前用無離子水沖洗并70%乙醇消毒;
充分風干后再裝樣,以防液體短路。
電穿孔體系通常由以下三部分組成:
細胞懸液;
外源DNA/RNA;
電穿孔緩沖液。
混合比例一般為:
細胞:DNA體積比為100:1;
最終體系體積為0.4–0.8 mL(根據(jù)電極間距確定)。
混合時應(yīng)輕輕吸打或使用低速渦旋混勻,避免產(chǎn)生氣泡。
氣泡是電穿孔失敗的主要原因之一。氣泡存在會造成電流集中,形成電弧放電,導致樣品燒毀或細胞死亡。
裝載樣品時應(yīng):
使用細嘴移液器緩慢注入;
保持電極片平行方向裝樣;
注樣完畢后輕輕敲擊電穿孔杯底部,使氣泡上浮消除;
觀察液面是否覆蓋電極,保證導電路徑完整。
準備儀器
打開Genepulser Xcell主機電源,確保顯示屏處于“Ready”狀態(tài)。檢查模塊連接是否正確,包括電容模塊、電阻模塊和電極接口。
放置電穿孔杯
打開電極架,將裝好樣品的電穿孔杯放入插槽,確保方向正確,杯體與電極完全接觸。
確認參數(shù)設(shè)置
根據(jù)實驗類型選擇適當模式(如指數(shù)衰減波或方波),輸入電壓、電容、電阻及脈沖時間參數(shù)。
例如:
大腸桿菌:2.5 kV,25 μF,200 Ω;
酵母:1.5 kV,50 μF;
哺乳動物細胞:250–400 V,方波模式。
執(zhí)行電穿孔
按下“Pulse”鍵后,系統(tǒng)自動完成能量釋放。屏幕實時顯示電壓與電流變化曲線。操作員應(yīng)在設(shè)備提示“Complete”前勿移動電極或取出樣品。
樣品取出
操作完成后,立即取出電穿孔杯,用無菌移液器吸出樣品至離心管中。此時細胞處于高應(yīng)激狀態(tài),應(yīng)盡快加入復蘇液或培養(yǎng)基進行恢復。
電穿孔后的細胞膜處于暫時性開放狀態(tài),需在無選擇壓力條件下復蘇以修復膜結(jié)構(gòu)。
常用復蘇方案如下:
加入預(yù)溫的LB或DMEM培養(yǎng)基;
靜置冰上5分鐘,然后在37°C或適宜溫度下培養(yǎng)45分鐘;
對哺乳動物細胞,可在培養(yǎng)皿中靜置1–2小時后換液。
復蘇期過短可能導致細胞未恢復即暴露于選擇壓力中,從而影響轉(zhuǎn)化率。
細菌樣品可直接涂布含抗性篩選的平板;真核細胞則可進行培養(yǎng)傳代或進一步檢測基因表達。
在此過程中,建議保存一部分未經(jīng)電穿孔的對照樣品,用于比較細胞存活率和導入效率。
電穿孔完成后,應(yīng)立即清洗電穿孔杯。若杯體重復使用,應(yīng):
先用去離子水沖洗;
再用70%乙醇浸泡5分鐘;
風干儲存于無塵環(huán)境。
電極架可用無水乙醇擦拭,保持干燥,防止腐蝕。主機外殼使用干凈布巾擦拭,避免液體進入接口。
出現(xiàn)電弧放電(Arcing)
原因:樣品中離子濃度過高、存在氣泡、電極未干凈;
解決:增加洗滌次數(shù)、檢查電極杯清潔度、重新裝樣。
電壓過低或電流異常
原因:連接不良、電極腐蝕或液體接觸不充分;
解決:重新插緊接口、更換電極杯。
細胞存活率低
原因:電壓過高、復蘇不充分;
解決:優(yōu)化參數(shù)、延長恢復時間或降低電壓。
轉(zhuǎn)化效率低
原因:DNA純度不足、脈沖時間不合適;
解決:使用高純度DNA、調(diào)整脈沖寬度或電場強度。
電穿孔儀屬于高壓設(shè)備,操作時嚴禁用手觸碰電極;
樣品裝載與取出過程中應(yīng)關(guān)閉電源;
若發(fā)生電弧或異響,應(yīng)立即停止實驗;
不得使用破裂或老化的電穿孔杯;
操作區(qū)域應(yīng)保持干燥,防止導電液體外泄;
建議佩戴絕緣手套和防護眼鏡;
實驗結(jié)束后關(guān)閉主機電源并拔除插頭。
每次實驗前應(yīng)先進行空載測試,確認設(shè)備運行正常;
同一實驗條件下重復三次以上,驗證穩(wěn)定性;
使用預(yù)冷的樣品可減少熱損傷;
對難轉(zhuǎn)染細胞可嘗試雙脈沖模式或降低電阻值;
樣品量不宜超過電穿孔杯標注最大容量;
若需處理多個樣品,應(yīng)嚴格區(qū)分電極間距與參數(shù),避免混淆;
建議在電穿孔后立即記錄實驗條件,以便優(yōu)化。
伯樂Genepulser Xcell電穿孔儀的樣品加載過程是電穿孔成功的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。它不僅涉及細胞與DNA的物理混合,更體現(xiàn)了對電化學參數(shù)與實驗細節(jié)的精準控制。通過規(guī)范的樣品準備、嚴格的加載步驟與周密的安全措施,研究人員可以有效提高轉(zhuǎn)化率、減少實驗誤差并延長設(shè)備壽命。
科學合理的樣品加載能夠確保電場能量均勻作用,避免電弧與細胞損傷,從而實現(xiàn)高效、穩(wěn)定的分子導入效果。掌握Genepulser Xcell的樣品加載技術(shù),對于任何從事分子克隆、基因編輯或細胞工程的實驗人員而言,都是實現(xiàn)高質(zhì)量科研結(jié)果的重要基礎(chǔ)。
          
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